LAPORAN FISIOLOGI HEWAN AIR INDEK KEMATANGAN GONAD

BAB I

PENDAHULUAN

1.1.      Latar Belakang

Perkembangan gonad pada suatu jenis ikan selalu menjadi perhatian bagi peneliti-peneliti reproduksi dimana peninjauannya dilakukan dari berbagai aspek yang termasuk di dalam gonad baik terhadap individu maupun populasi. Dalam individu telur terdapat proses yang dinamakan villetogenesis yaitu terjadinya pengendapan kuning telur pada tiap-tiap individu telur.

Suatu jenis ikan akan mulai bertelur (masak kelamin) pada umumnya berbeda dengan jenis ikan lainnya, sebab masing-masing jenis ikan mengalami perkembangan gonad dengan lama waktu yang berbeda-beda atau sesuai dengan umur yang harus dicapai oleh suatu jenis ikan untuk mulai bertelur. Perkembangan gonad ikan pada umumnya dengan pertambahan umur ikan, yaitu semakin dewasa seekor ikan maka perkembangan gonadnya akan semakin sempurna untuk mengadakan pembentukan dan pemasakan telur.

Di perkembangan gonad didalam reproduksi, sebagian dihasilkan dari metabolisme tertuju kepada perkembangan gonad. Berat gonad semakin bertambah dan mencapai maksimum ketika ikan akan memijah, kemudian beratnya menurun setelah pemijahan. Percobaan kondisi gonad ini dapat dinyatakan dengan suatu indeks kematangan gonad dinyatakan sebagai berat gonad dibagi beserta tubuh ikan (termasuk gonad) dikalikan 100 %.

Sebelum melakukan proses pemijahan, terlebih dahulu ikan mengalami perkembangan organ-organ seksualnya. Dalam hal ini yang perlu dicermati dan diketahui oleh para petani ikan yaitu mengenai perkembangan gonad ikan itu sendiri. Proses inilah yang dinamakan dengan proses kematangan gonad. Matang atau tidaknya gonad ikan sangat mempengaruhi keberhasilan dalam usaha pembenihan ikan. Jika ikan yang akan dipijahkan sudah benar-benar matang gonad, maka pemijahan pun dapat berlangsung dengan baik dan telur-telur yang dihasilkan pun akan baik juga. Untuk mengetahui tingkat kematangan gonad maka diperlukan ilmu dan keahlian dalam mempelajari tentang gonad ikan.

Untuk mengetahui terhadap kematangan gonad suatu ikan dapat dilakukan dengan beberapa cara, diantaranya adalah pengamatan gonad berdasarkan kondisi gonad itu sendiri dan berdasarkan morfologi atau penampakan bagian luar tubuh ikan yang mengarah pada ciri-ciri matang gonad. Antara lain pada induk betina ciri yang paling utama adalah pada bagian perut terlihat membesar dan bila disentuh akan terasa lembek atau empuk. Sedangkan pada induk jantan apabila pada bagian perut diurut, akan mengeluarkan cairan kental putih susu.

Untuk memperoleh datatentang kematangan gonad ikan dapat dilakukan dengan dua cara, yaitu : cara pertama, data tentang kematangan gonad dapat diketahui dengan cara mendetail karena dilakukan dalam laboratorium dan prosesnyapun membutuhkan waktu yang relatif lama karena harus melalui penelitian dan percobaan. Sedangkan cara yang kedua kematangan gonad dapat diketahui melalui morfologi ikan, cara ini banyak dilakukan oleh para petani ikan. Namun syarat utamanya yaitu petani ikan harus benar-benar sudah mengetahui ciri-ciri morfologi induk ikan yang sudah matang gonad, sehingga data yang diperoleh akan spesifik.

Untuk mempelajari hal tersebut, dalam sekala pendidikan peerkuliahan biasanya dilakukan praktikum-praktikum. Praktikum inilah yang nantinya akan memunculkan suatu kreatifitas dan ilmu yang nantinya dapat membekali pribadi mahasiswa apabila benar-benar telah terjun dalam dunia perikanan secara nyata.

1.2.      Tujuan Praktikum

       Adapun tujuan dalam melakukan praktikum pengamatan mengenai Indeks kematangan gonad dan Fekunditas ikan, adalah sebagai berikut :

1. Untuk mengetahui perbedaan antara gonad ikan jantan dengan gonad ikan betina.
2. Untuk memperoleh data tentang fekunditas atau jumlah telur yang ada pada induk betina.
3. Untuk mengetahui ciri-ciri innduk yang sudah matang gonad dilihat dari morfologi dan histologi.
4. Untuk memperoleh data tentang indeks kematangan gonad antara induk ikan yang satu dengan yang lain berdasarkan bobot ikan dan panjang tubuh ikan.

5.      Untuk mengetahui perubahan-perubahan yang terjadi dalam gonad secara kuantitatif.

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1.      Ikan Lele ( Clarias batrachus )

             2.1.1.  Morfologi Dan Klasifikasi Ikan Lele ( Clarias batrachus )

 Ikan lele secara morfologi memiliki bentuk tubuh yang memanjang dan berkulit licin ( tidak bersisik ). Sesuai dangan familinya yaitu Clariidae yang memiliki bentuk kepala pipih dengan tulang keras sebagai batok kepala. Disekitar mulut terdapat 4 pasang sungut. Pada sirip dada terdapat patil atau duri keras yang berfungsi sebagai alat untuk mempertahankan diri. Secara anatomi ikan lele meiliki alat pernafasan tambahan yang terletak di bagian dapan rongga insang, yang memungkinkan ikan untuk mengambil oksigen langsung dari udara. Oleh karena itu, ikan lele dapat hidup dalam kondisi perairan yang mengandung sedikit kadar oksigen(Suyanto,1999).

Gambar 1. Ikan Lele ( Clarias batrachus ).

            Ikan lele menurut klasifikasi berdasar taksonomi yang dikemukakan oleh Weber de Beaufort (1965) digolongkan sebagai berikut :

Ø  Filum               : Chordata

Ø  Sub Filum        : Vertebrata

Ø  Kelas               : Pisces

Ø  Sub Kelas        : Teleostei

Ø  Ordo                : Ostariophysi

Ø  Sub Ordo        : Siluroidae

Ø  Famili              : Clariidae

Ø  Genus              : Clarias

Ø  Species            : Clarias batrachus

Ikan lele adalah pemakan jasad hewani yaitu krustassea kecil, larva serangga, cacing dan moluska. Ikan lele merupakan ikan yang termasuk dalam famili Clariidae memiliki bentuk badan yang memanjang, berkepala pipih, tidak bersisik, memiliki empat pasang kumis yang memanjang sebagai alat peraba, dan memiliki alat pernafasan tambahan yang bekerja apabila insang tidak dapat memperoleh kebutuhan oksigen pada bagian depan rongga insang yaitu arborescen organ. Bagian depan badannya terdapat penampang melintang yang membulat, sedang bagian tengah dan belakang berbentuk pipih (Najiyati, 1992).

Ikan lele secara alami bersifat nocturnal, artinya aktif pada malam hari atau lebih menyukai tempat yang gelap, pada siang hari ikan lele lebih memilih berdiam diri dan berlindung di tempat-tempat gelap. Dalam usaha budidaya ikan lele dapat beradaptasi menjadi sifat diurnal. Ikan lele termasuk dalam golongan ikan pemakan segala (omnivora) tetapi cenderung pemakan daging (karnivora) (Anonimous, 1992 dalam Fitriah, 2004). Sebagai alat bantu renang, lele memiliki tiga buah sirip tunggal yaitu sirip punggung, sirip ekor, sirip dubur. Lele juga memiliki sirip berpasangan yaitu sirip dada dan sirip perut. Sirip dada dilengkapi dengan sirip yang keras dan runcing yang disebut dengan patil. Patil ini berguna sebagai senjata dan alat bantu untuk bergerak (Khairuman dan Amri, 2002 dalam Fitriah, 2004).

2.2.      Indeks Kematangan Gonad (IKG)

             Menurut Ichsan Effendie ( 1978 ), pencatatan perubahan atau tahap-tahap kematangan gonad diperlukan untuk mengetahui perbandingan ikan-ikan yang akan melakukan reproduksi dengan ikan-ikan yang tidak melakukan reproduksi. Juga dari pengetahuan tahap kematangan gonad ini akan didapatkan keterangan bila mana ikan itu akan memijah, baru memijah atau bahkan setelah memijah. Mengetahui untuk pertama kali gonadnya menjadi masak, ada hubbungannya dengan pertumbuhan ikan itu sendiri dan factor-faktor keliling seperti lingkungan yang mempengaruhinya Tiap-tiap spesies ikan pada waktu pertama kali gonadnya masak tidak sama ukurannya. Demikian pula yang sam spesiesnya. Lebih-lebih pada ikan yang sama spesiesnya itu tersebar pada lintang yang perbedaannya lebih dari 5 derajat, maka akan terlihat perbedaan dalam ukran dan umur ketika mencapai kematangan gonad untuk pertama kalinya.

Pengamatan kematangan gonad dilakukan dengan dua cara, yang pertama dengan cara histology dan dilakukan di laboratorium. Yang kedua dengan cara pengamatan morfologi yang bisa dilakukan di laboratorium dan bisa juga dilakukan di lapangan. Dari penelitian secara histology akan diketahui anatomi perkembangan gonad tadi lebih jelas dan mendetail. Sedangkan hasil pengamatan secara morfologi tidak akan sedetail cara histology. namun cara morfologi banyak dilakukan oleh para peneliti.

Dasar yang dipakai untuk menentukan tingkat kematangan gonad dengan cara morfologi adalah bentuk, ukuran panjang dan berat, warna dan perkembangan isi gonad yang terlihat. Perkembangan gonad ikan betina lebih banyak diperhatikan dari pada ikan jantan karena perkembangan diameter atau besarnya telur yang terdapat dalam gonad akan lebih mudahdilihat dari pada sperma yang ada dalam testis.

                 Selama proses reproduksi, sebelum pemijahan terjadi sebagian besar hasil metabolisme tertuju untuk perkembangan gonad. Gonad akan bertambah berat seiring dengan makin besar ukuran tubuhnya, termasuk pada garis tengah telurnya. Gonad mencapai berat dan ukuran maksimum sesaat sebelum ikan itu memijah, kemudian turun dengan cepat selama pemijahan berlangsung sampai proses selesai (Effendie, 1979).

Secara morfologi perubahan-perubahan ini dapat dinyatakan dalam tingkat kematangan gonad. Pengamatan morfologi meliputi warna, penampakan dan ukuran terhadap rongga tubuh. Perhitungan secara kuantitatif dinyatakan dengan Indeks Kematangan Gonad (IKG), suatu persentase perbandingan berat gonad dengan berat tubuh.

Menurut Effendie (1997),  nilai IKG dapat dirumuskan sebagai berikut :

IKG     = BG

Keterangan      :

 IKG     = Indeks Kematangan Gonad  (%)

• Bg       = Berat Gonad Ikan (gram)
• Bt        = Berat tubuh Ikan (gram)

2.3.      Fekunditas Ikan

   Fekunditas adalah jumlah telur yang telah matang dalam suatu ovarium sebelum dikeluarkan pada waktu memijah. Fekunditas yang seperti ini dinamakan fekunditas mutlak (fekunditas individu), sedangkan fekunditas relatif adalah jumlah telur per satuan berat dan panjang ikan (Effendie, 2002).

Haryono (2006) menyatakan bahwa, fekunditas ikan telah dipelajari bukan saja merupakan salah satu aspek dari natural history, tetapi sebenarnya ada hubungannya dengan studi dinamika populasi, sifat-sifat rasial, produksi dan persoalan stok-rekruitmen. Pengetahuan mengenai fekunditas merupakan salah satu aspek yang memegang peranan penting dalam biologi perikanan. Arti fekunditas secara tidak langsung kita dapat menaksir jumlah anak ikan yang akan dihasilkan dan akan menentukan pula jumlah ikan dalam kelas umur yang bersangkutan. Jumlah telur yang dikeluarkan merupakan satu mata rantai penghubung antara satu generasi dengan generasi berikutnya, tetapi secara umum tidak ada hubungan yang jelas antara fekunditas dengan jumlah telur yang dihasilkan. Dalam hubungan ini tentu ada faktor-faktor lain yang memegang peranan penting dan sangat erat hubungannya dengan strategi reproduksi dalam rangka mempertahankan kehadiran spesies itu di alam. Fekunditas juga merupakan suatu subyek yang dapat menyesuaikan dengan bermacam-macam kondisi terutama dengan respons terhadap makanan.

Wijaya (2008) menyatakan bahwa, pada umumnya fekunditas tertinggi didapatkan pada ikan-ikan yang telurnya bersifat relatif, kemudian jumlah sedang yaitu 1000 - 10.000 telur diproduksi oleh ikan yang meletakkan telurnya di dasar atau di atas vegetasi laut, sedangkan jumlah telur terkecil dihasilkan oleh ikan yang mengerami telurnya. Fekunditas tahunan sangat bergantung pada ukuran dan umur ikan serta pada kondisi nutrisinya.

Effendie (1997) menyatakan bahwa, beberapa kegunaan pengetahuan fekunditas antara lain sebagai bagian studi sistematik atau studi mengenai ras, dinamika populasi, produktivitas, potensi reproduksi, dan sebagainya. Dalam bidang akuakultur, jumlah telur yang dihasilkan oleh ikan pada waktu pemijahan secara alami atau buatan sangat jelas kegunaannya terutama dalam persiapan fasilitas kultur ikan tersebut serta untuk keperluan selanjutnya.

Yasidi (2005) menyatakan bahwa, informasi mengenai besarnya fekunditas dari suatu spesies merupakan salah satu indikator untuk  menduga  besar potensi reproduksinya (Reproductive Potential). Mengenai hubungan panjang dan fekunditas beberapa jenis ikan menyimpulkan bahwa pada dasarnya bila data panjang dan fekunditas diplotkan dalam bentuk regresi, maka mempunyai kecenderungan slope yang sama yaitu hubungan positif. Namun terjadi variasi yang besar pula pada fekunditas persatuan ukurannya.

Effendie (2002) menyatakan bahwa, untuk spesies tertentu pada umur yang berbeda-beda memperlihatkan fekunditas yang bervariasi sehubungan dengan persediaan makanan tahunan. Pengaruh ini terjadi juga untuk individu yang berukuran sama dan dapat pula untuk populasi secara keseluruhan. Sebagian dari pengaruh tadi mempengaruhi telur dan persediaan telur.

Effendie (1997) menyatakan bahwa, mengenai hubungan panjang dan fekunditas beberapa jenis ikan menyimpulkan bahwa pada dasarnya bila data panjang dan fekunditas diplotkan dalam bentuk regresi, maka mempunyai kecenderungan slope yang sama yaitu hubungan positif. Namun terjadi variasi yang besar pula pada fekunditas persatuan ukurannya. Informasi mengenai besarnya fekunditas dari suatu spesies merupakan salah satu indikator untuk  menduga  besar potensi reproduksinya (Reproductive Potential).

Suradi (2008) menyatakan bahwa, Penerapan fekunditas relatif telah banyak dilakukan oleh beberapa orang peneliti. Fekunditas relatif adalah jumlah telur per satuan berat atau panjang. Fekunditas inipun sebenarnya mewakili fekunditas individu kalau tidak diperhatikan berat atau panjang ikan. Ada yang mengambil berat sebagai pembaginya dan ada pula yang mengambil panjang. Bahkan ada yang mengkombinasikan penggunaan fekunditas relatif yaitu ovari per satuan berat dengan panjang ikan. Namun baik fekunditas individu maupun fekunditas relatif tidak memperlihatkan kapasitas reproduksi dari populasi karena fekunditas individu tidak menunjukkan fekunditas populasi. Penggunaan fekunditas relatif dengan satuan berat lebih mendekati kepada kondisi ikan itu sendiri dari pada dengan panjang, lebih mencerminkan status ikan betina dan kualitas dari telur kalau berat yang dipakai tanpa berat alat-alat pencernaan makanannya.

Rosmawati (2005) menyatakan bahwa, dalam bidang akuakultur, jumlah telur yang dihasilkan oleh ikan pada waktu pemijahan secara alami atau buatan sangat jelas kegunaannya terutama dalam persiapan fasilitas kultur ikan tersebut untuk keperluan selanjutnya. Beberapa kegunaan pengetahuan fekunditas antara lain sebagai bagian studi sistematik atau studi mengenai ras, dinamika populasi, produktivitas, potensi reproduksi, dan sebagainya.

Effendie (2002) menyatakan bahwa, untuk spesies tertentu pada umur yang berbeda-beda memperlihatkan fekunditas yang bervariasi sehubungan dengan persediaan makanan tahunan. Pengaruh ini terjadi juga untuk individu yang berukuran sama dan dapat pula untuk populasi secara keseluruhan. Sebagian dari pengaruh tadi mempengaruhi telur dan persediaan telur. Menurut Effendi (1997) nilai fekunditas dapat dinyatakan dengan rumus :

Fekunditas =

Ø  Gravimetrik = G/g = F/f

Keterangan :

F = Fekunditas (telur)

G = Berat gonad keseluruhan (gram)

V = Volume pengenceran (ml)

 X = Jumlah telur yang diamati pada mikroskop (telur)

 Q = Berat gonad sebagian (gram)

BAB III

METODOLOGI PRAKTIKUM

3.1.        Waktu dan Tempat Praktikum

  Kegiatan praktikum Fisiologi Hewan Air, Menghitung Indeks Kematangan Gonad dan Fekunditas Ikan dilaksanakan pada hari Selasa, tanggal 17 januari 2012, pukul 10.00 – 12.20 WIB. Dan praktikum ini bertempat di Laboratorium dan Hatchery Departement Agrabisnis Perikanan PPPPTK /VEDCA Cianjur.

3.2.        Alat dan Bahan

  Alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah alat bedah, baki, jarum pentul, timbangan, cawan petri, gelas ukur, lap atau tisu, dan alat tulis. Sedangkan bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah induk ikan Lele (Clarias batrachus), betina matang gonad.

3.3.      Prosedur Kerja

             Adapun langkah kerja yang dilakukan dalam pelaksanaan praktikum, adalah sebagai berikut :

1. Siapkan alat dan bahan.
2. Timbang berat tubuh ikan atau bobot ikan.
3. Amati cirri-ciri morfologi antara jantan dan betina.
4. Matikan ikan dengan cara menusukan jarum pada bagian kepala.
5. Setelah ikan mati, lakukanlah pembedahan pada bagian perut ikan dengan cara mengguntingnya dari bagian anus ke atas sampai kelihatan gonadnya.
6. Ambil gonad ikan secara hati-hati kemudian timbang dan ukur volumenya.
7. Untuk gonad ikan betina, lakukan pengambilan sampel telur pada beberapa titik (5 titik) kemudian timbang dan ukur volumenya.
8. Hitung jumlah telur pada sampel yang sudah diambil.
9. Hitunglah indeks kematangan gonad dan fekunditas gonadnya.

3.4.      Analisa Data

             IKG (Indeks kematangan gonad) dalam ini dapat diartikan sebagai nilai perbandingan antara gonad dengan tubuh ikan. Indeks kematangan gonad hanya berlaku pada ikan-ikan yang sudah mencapai ukuran dewasa dalam arti lain gonadnya.

IKG = BG/BT x 100%

Keterangan :

Ø  BG = Berat gonad (gram)

Ø  BT = Berat tubuh (gram)

Fekunditas (F)

            Beberapa cara menghitung fekunditas antara lain :

1.      Langsung (manual)

2.      Gravimetrik

3.      Volumetrik

4.      Gabungan (Gravimetrik dan Volumetrik)

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1.      Hasil

             

laporan ketahanan tubuh ikan di luar media air

Dhariyan

o              

Laporan Praktikum Fisiologi Hewan Air RESPIRASI

Laporan Praktikum Fisiologi Hewan Air

RESPIRASI

HENDRA

Abstract

Respiration or breathing is gas exchange of O₂ and CO₂ in the respiratory organs of living beings. Source O₂ in the water can come from air and photosynthesis of phytoplankton. Aerobic respiration is a breathing process that requires oxygen from the air, while anaaerob Respiration is the process of respiration that does not require oxygen. Factors that affect the respiratory process, there are two internal and external factors. Although some fish species can survive in waters with oxygen concentrations of 3 ppm, but the minimum acceptable concentration of most cultured aquatic species to survive is 5 ppm. In observation of respiration tilapia with some therapies such as, fish nila at entry into the jar filled with water ¾, with a temperature of 36⁰C, then opened his mouth was monitored every 3 minutes 5 times. And in the achievement of results in the observation that the respiration occurs in tilapia (Oreochromis niloticus), that is carried out by Group 5 with the temperature at 36⁰C not seen the data after every 3 minutes for 5 hours of opening of the mouth it increased rapidly, but the fish do not die after the practice of composition dead fish. While the consumption of oxygen from the observations of DOo = 3.2 mg / ℓ; point = 2,3 mg / ℓ, 3.4 x 10^-4 mg/ ℓ oxygen consumption. The greater the temperature lower is the amount of oxygen in the water.

Keywords: Respiration, Nila Fish (Oreochromis niloticus), DO

Abstrak

Respirasi atau pernafasan adalah pertukaran gas O₂ dan CO₂ di dalam organ pernafasan makhluk hidup. Sumber O₂ dalam perairan dapat berasal dari udara dan fotosintesis fitoplankton. Respirasi aerob ialah suatu proses pernafasan yang membutuhkan oksigen dari udara, sedangkan Respirasianaaerob ialah suatu proses pernafasan yang tidak membutuhkan oksigen. Faktor yang mempengaruhi proses respirasi ada dua yaitu faktor internal dan eksternal. Meskipun beberapa jenis ikan mampu bertahan hidup pada perairan dengan konsentrasi oksigen 3 ppm, namun konsentrasi minimum yang masih dapat diterima sebagian besar spesies biota air budidaya untuk hidup adalah 5 ppm. Pada pengamatan tentang respirasi ikan  nila dilakukan dengan beberapa perlakuan diantaranya adalah, ikan nila dimasukkan ke dalam toples yang sudah diisi air ¾ bagian, dengan suhu 36⁰C . Kemudian diamati bukaan mulut setiap 3 menit sebanyak 5 kali. Dan didapatkan hasil mengenai pengamatan respirasi yang terjadi pada ikan nila (Oreochromis niloticus) yang dilakukan oleh kelompok 5 dengan suhu 36⁰C didapatkan data setelah diamati setiap 3 menit selama 5 kali yaitu bukaan mulut bertambah cepat tapi ikan tidak mati setelah praktikum berakhir ikan mati. Sedangkan konsumsi oksigen dari pengamatan yaitu DO_o = 3,2 mg/ℓ ; DO_t = 2,3 mg/ℓ ,konsumsi oksigen sebesar 3,4 x 10^-4 mg/ℓ. Semakin tinggi temperatur maka semakin rendah jumlah oksigen yang terbuat dalam air.

Kata kunci : Respirasi, Ikan nila (Oreochromis niloticus), DO

1.    PENDAHULUAN

1.1   Pengertian Respirasi

Proses peningkatan oksigen dan pengeluaran karbondioksida oleh darah melalui permukaan alat pernafasan organism dengan lingkungannya dinamakan pernafasan (respirasi). Sistem organ yang berperan dalam hal ini adalah insang. Oksigen merupakan bahan pernafasan yang dibutuhkan oleh sel untuk berbagai reaksi metabolisme. Bagi ikan, oksigen diperlukan oleh tubuhnya untuk menghasilkan energi melalui oksidasi lemak dan gula (Triastuti et.al,. 2009).

Pertukaran gas oksigen dan karbondioksida dalam tubuh makhluk hidup disebut pernafasan atau respirasi. O₂ dapat keluar masuk jaringan melalui difusi. Pada dasarnya metabolisme yang normal dalam sel-sel makhluk hidup memerlukan oksigen dan karbondiokdisa. Pada hewan vertebrata terlalu besar untuk dapat terjadinya interaksi secara langsung antara masing-masing sel tubuh dengan lingkungan luar tubuhnya. Untuk itu organ-organ tertentu yang bergabung dalam sistem pernafasan dikhususkan untuk melakukan pertukaran gas pernafasan bagi keperluan seluruh sel tubuhnya (Rida, 2008).

1.2   Jenis-Jenis Respirasi

Respirasi aerob. Pertukaran oksigen dan karbondioksida antara organisme dan lingkungannya dikenal sebagai respirasi aerob. Respirasi anaerob. Karbondioksida yang diberikan dari organisme tertentu tidak ada oksigen yang diambil. Kebutuhan oksigen diperoleh dari susunan karbohidrat dan lemak dalam tubuh. Inilah yang disebut dengan respirasi anaerob (Weichert, 1959).

Menurut Imam Abror (2010), respirasi dapat digolongkan menjadi 2 jenis berdasarkan persediaan O₂ di udara, yaitu respirasi aerob dan anaerob. Respirasi aerob merupakan proses respirasi yang membutuhkan O₂, sebaliknya respirasi anaerob merupakan respirasi yang berlangsung tanpa membutuhkan O₂. Perbedaan antara keduanya akan terlihat pada proses tahapan reaksi dalam respirasi. Proses transpor gas-gas secara keseluruhan berlangsung secara difusi.

1.3   Faktor-Faktor yang Mempengaruhi Respirasi

Menurut Affandi (2002) dalam Anwar et.al, (2009), faktor-faktor yang mempengaruhi tingkat konsumsi oksigen terbagi menjadi dua, yaitu faktor luar dan dalam. Faktor luar dipengaruhi oleh tekanan parsial oksigen dan suhu. Peningkatan suhu pada batas tertentu akan diikuti dengan peningkatan laju metabolisme. Sedangkan faktor dari dalam adalah yang berkaitan langsung dengan ikan itu sendiri, seperti ukuran ikan, aktifitas, kondisi kesehatan ikan, dan seks.

Menurut Mattians, dkk (1998) dalam Ratningsih (2008), respirasi pada ikan berhubungan luas dengan permukaan organ respirasi, darah, dan kemampuan dari organisme untuk mendeteksi pengurangan oksigen pada lingkungan dan upaya penyesuaian fisiologis untuk mengimbangi kekurangan oksigen. Sedangkan menurut Chahaya (2003) dalam Ratningsih (2008), partikel-partikel bahan organic terlarut yang ikut terhisap bersama air secara terus-menerus dapat mengganggu proses respirasi pada ikan. Bereaksinya partikel tersebut dengan fraksi tertentu dari lender insang menyebabkan lender yang berfungsi sebagai pelindung diproduksi lebih banyak sehingga terjadi penumpukan lendir yang menutupi lamella insang. Berkurangnya oksigen terlarut dan terhambatnya proses respirasi pada ikan mengakibatkan menurunnya laju konsumsi oksigen.

  

1.4   Sumber O₂ dalam Air 

Menurut Effendi (2003), sumber oksigen terlarut dapat berasal dari difusi oksigen yang terdapat di atmosfer (sekitar 35%) dan aktifitas fotosintesis dari tumbuhan air dan fitoplankton. Difusi oksigen dari atmosfer ke dalam air dapat terjadi secara langsung pada kondisi air diam (stagnant). Difusi juga dapat terjadi karena agitasi atau pergolakan massa air akibat adanya gelombang atau ombak dan air terjun. Namun, pada hakikatnya difusi oksigen dari atmosfer ke perairan berlangsung relatif lambat, meskipun terjadi pergolakan massa air. Oleh karena itu, sumber utama oksigen di perairan adalah fotosintesis.

Menurut Cole (1983) dalam Sutimin (2011), salah satu sumber oksigen terlarut yang penting dalam perairan adalah oksigen di atmosfer yang terlarut dalam massa air pada permukaan air yang dihasilkan melalui proses difusi. Sedangkan menurut Boyd et.al, (1991) dalam Sutimin (2011), sebagian besar oksigen dalam ekosistem perairan berasal dari fotosintesis oleh fitoplankton. Pada perairan dangkal, suplai oksigen didominasi oleh tanaman tepi, makrofita, dan alga bentik.

Oksigen dalam perairan juga berasal dari faktor biologis, diantaranya adalah aktifitas klorofil pada tanaman dari perifiton di sungai mengalir. Alga planktonik di dalam kolam atau danau, dan tanaman air berbunga. Di pesisir yang membentang di perairan. Hal ini juga menyebabkan kelimpahan oksigen apabila tumbuhan air berlimpah dari cahaya matahari (Arrignon, 1995).

1.5   DO (Oksigen Terlarut)

Dilihat dari jumlahnya, oksigen (O₂) terlarut adalah salah satu jenis gas terlarut dalam air dengan jumlah yang sangat banyak, yaitu menempati urutan kedua setelah nitrogen. Namun jika dilihat dari segi kepentingan untuk budidaya ikan, oksigen menempati urutan teratas. Oksigen yang diperlukan ikan untuk pernafasannya harus terlarut dalam air. Hanya jenis ikan tertentu, seperti lele, gurami, dan tambakan yang mampu menghirup oksigen di udara bebas karena mempunyai alat pernafasan tambahan (Kordi, 2004).

Atmosfer bumi mengandung oksigen sekitar 210 ml/L. Oksigen merupakan salah satu gas yang terlarut dalam perairan. Kadar oksigen yang terlarut di perairan alami bervariasi, tergantung pada suhu, salinitas, turbulensi air, dan tekanan atmosfer. Semakin besar suhu dan ketinggian (alfifut) serta semakin kecil tekanan atmosfer, kadar oksigen terlarut semakin kecil (Effendi, 2003).

Kandungan oksigen terlarut (DO = Dissolved Oxygen) minimal 4 ppm (part per million). Beberapa ikan hidup dengan baik pada kandungan oksigen kurang dari 4 ppm, terutama ikan-ikan yang mempunyai alat pernafasan tambahan, yang memungkinkannya mengambil oksigen langsung dari udara bebas seperti lele (Clarias sp.), sepat (Trichogaster sp.), gabus (Channastriata), foman (Channa micropeites), gurami (Osphronemus gouramy), tambakan (Helostoma femminoki), dan betook (Anabas testudineus) (Kordi, 2008).

1.6   Mekanisme Masuknya O₂  di Perairan

Difusi oksigen dari atmosfer ke dalam air dapat terjadi secara langsung pada kondisi air diam (stagnant). Difusi juga dapat terjadi karena agitasi atau pergolakan massa air akibat adanya gelombang atau ombak dan air terjun. Namun pada hakikatnya difusi oksigen dari atmosfer ke perairan berlangsung relatif lambat, meskipun terjadi pergolakan massa air oleh karena itu, sumber utama oksigen di perairan adalah fotosintesis ( Effendi, 2003 ).

Menurut Salmin (2005 ), kecepatan difusi oksigen dari udara tergantung dari beberapa faktor, seperti kekeruhan air, suhu, salinitas, pergerakan massa air, dan udara seperti arus, gelombang, dan pasang surut. Sedangkan menurut Odum (1971) dalam Salmin (2005), menyatakan bahwa kadar oksigen dalam air laut akan bertambah dengan semakin rendahnya suhu dan berkurang dengan semakin tingginya salinitas. Pada lapisan permukaan kadar oksigen lebih tinggi karena adanya proses difusi antara air dan udara.

1.7   Konsumsi O₂ dalam Perairan

Peningkatan suhu sebesar 10% akan meningkatkan oksigen sebesar 10% dekomposisi bahan organik dan oksidasi bahan anorganik dapat mengurangi kadar oksigen terlarut hingga mencapai O₂  (anaerob) . Hubungan antara kadar oksigen terlarut jenuh dan suhu menggambarkan bahwa semakin tinggi suhu kelarutan oksigen semakin berkurang . Kelarutan oksigen dan gas-gas lain juga berkurang dengan meningkatnya salinitas (Effendi, 2003).  Menurut Lazzati (2011), konsentrasi oksigen terlarut merupakan parameter yang sangat penting dalam menentukan kualitas perairan tambak. Konsentrasi oksigen ditentukan oleh keseimbangan antara produksi dam konsumsi olsigen dalam ekosistem . Oksigen diproduksi oleh komunitas autotrof melalui pernafasan. Di samping itu, oksigen juga diperlukan untuk perombakan bahan organik dalam ekosistem.

Menurut Salmin (2005), oksigen terlarut (Dissolved Oxygen = DO) dibutuhkan oleh semua jasad hidup untuk pernafasan, proses metabolisme atau pertukaran zat yang kemudian menghasilkan energi. Untuk pertumbuhan dan pembiakan, di samping itu oksigen juga dibutuhkan untuk oksidasi bahan-bahan organik dan anorganik dalam proses aerobik.

1.8   Fase-Fase Respirasi

Dalam vertebrata terdapat 2 fase respirasi yaitu eksternal dan internal. Respirasi eksternal digunakan untuk menunjukkan pertukaran gas antara darah dengan lingkungan, Respirasi internal sama dengan pertukaran gas antara darah dan jaringan atau sel di dalam tubuh. Respirasi eksternal biasanya terdapat pada kapiler insang tetapi beberapa struktur seperti kulit lainya (Weichert, 1959).

     Berdasarkan Rida (2008), ada dua tahap pernapasan, tahap pertama oksigen masuk ke dalam dan pengeluaran karbondioksida keluar tubuh melalui organ-organ pernafasan disebut respirasi eksternal, dan pengangkutan gas-gas pernapasan dari organ-organ pernapasan ke jaringan tubuh atau  sebaliknya di lakukan oleh sistem sirkulasi . Tahap kedua adalah pertukaran O₂ dari cairan tubuh  (darah) dengan CO₂  dari sel-sel dalam jaringan disebut respirasi internal.

1.9   Hubungan Suhu dengan Respirasi

Peningkatan suhu mengakibatkan peningkatan viskositas reaksi kimia, evaporasi  dan volatilisasi. Peningkatan suhu juga menyebabkan penurunan kelarutan gas dalam air, misalnya gas O₂, N₂, CH₄, dan sebagainya (Huslam (1995) dalam Effendi (2003). Selain itu peningkatan suhu juga meningkatan kecepatan metabolisme dan respirasi organisme air dan selanjutnya mengakibatkan peningkatan konsumsi oksigen. Peningkatan suhu perairan sebesar 10⁰C menyebabkan terjadinya peningkatan konsumsi oksigen oleh organisme akuatik sekitar 2-3 kali lipat. Namun, peningkatan suhu ini disertai dengan penurunan kadar oksigen terlarut sehingga keberadaan oksigen sering kali tidak mampu memenuhi kebutuhan oksigen bagi organisme akuatik untuk melakukan proses metabolisme dan respirasi (Effendi, 2003).

     Menurut Giese (1968), tingkat pernafasan dan suspensi sel meningkatnya suhu dalam batas-batas zona biokinetik suhu bkoefisien (Q₁₀). Respirasi umumnya ditemukan dalam kisaran 2 sampai 4 dan menunjukan suhu 10⁰C. Peningkatan suhu meningkatkan laju reaksi dua kali lipat sampai empat kali lipat suhu yang lebih tinggi dari suhu optimal di zona biokinetik menyebabkan respirasi ikan .

1.10    Perbedaan Organ Respirasi Ikan Domersal dan Ikan Pelagis

Beberapa ikan laut (pelagis) membiarkan mulutnya terbuka dan menggunakan gerakan majunya untuk mengalirkan air melalui insang. Proses ini disebut ventilasi dorong , jika gerakan makeret melebihi 6,4 meter/detik maka gerakan memompa operculum menjadi lambat dan kalau melebihi 0,6 meter/detik gerakan ini berhenti dan ikan tergantung pada ventitasi dorong  (Villee et al, 1984).

     Ikan dasar dari atlantik toadfish (osamus) memiliki permukaan insang sekitar 2 cm²/g dari berat badan. Lain lagi nilainya sekitar 4 cm² /g pada makarel memiliki luas permukaan insang sampai 10 cm²/g. Tapi luas permukaan insang ini tergantung tingkat aktifitas dan rata-rata konsumsi oksigen. Pernapasan pada kulit terjadi melalui kapiler darah di bawah lapisan kulit (Suryani, 2010).

2. METODOLOGI

2.2   Fungsi Alat dan Bahan

2.2.1   Fungsi Alat

Alat – alat yang digunakan dalam praktikum Fisiologi Hewan Air materi Respirasi adalah :

-     Toples 2 liter                        : sebagai wadah air dan ikan.

-     Nampan                               : sebagai tempat untuk alas pertimbangan dan  tempat alat.

-     Lap basah                            : untuk mencegah agar ikan nila (Oreochromis  niloticus ) tetap hidup dan tidak stress.

-     Termometer                         : untuk mengukur suhu air pada toples.

-     Heater akuarium                  : untuk menstabilkan suhu pada toples.

-     Hand tally counter               : untuk menghitung bukaan mulut pada ikan.

-     DO meter                             : untuk mengukur oksigen terlarut (DO) air.

-     Stopwatch                            : untuk menghitung waktu pengamatan.

-     Ember                                  : untuk tempat sementara ikan sebelum   pengamatan.

-     Selang aerator                     : untuk suplai O₂.

2.2.2      Fungsi Bahan

Bahan – bahan yang digunakan pada praktikum Fisiologi Hewan Air materi  Respirasi adalah :

-     Ikan nila (Oreochromis niloticus ) : sebagai objek yang akan diamati.

-     Air tawar                              : sebagai media air.

-     Aquades                              : sebagai bahan untuk mengkalibrasi

DO meter.

-     Es batu                                 : sebagai bahan untuk menurunkan suhu air

3. DATA HASIL PENGAMATAN

3.1    Tabel ∑ Respirasi

Kel	Ulangan					∑ R	Rata – rata
	31	33	33	34	35
1	331	354	272	315	312	1584	316,8
2	124	543	359	342	330	1698	339,6
3	332	353	360	393	457	1895	379
4	331	324	322	339	457	1321	264,2
5	351	594	563	549	541	2598	519,6
6	357	340	336	328	327	1688	337,5
7	244	230	257	269	338	1338	334,5
8	313	325	354	322	328	1642	328,4
9	287	277	216	207	228	1215	243
10	276	280	305	475	513	1849	369,8

3.2    Tabel DO

Kelompok	DO0 (Mg/L)	DOt (Mg/L)	∑ R
1	3,1	2,2	1584	0,003
2	0,2	0,9	1698	0,0004
3	3,1	2,6	1895	2,6.10-4
4	3,4	2,6	1321	6.10-4
5	4,2	2,3	2598	3,4. 10-4
6	3,4	2,9	1688	2,9. 10-4
7	4,2	3,1	1338	8,2. 10-4
8	0,7	2,5	1642	1,09. 10-3
9	4,0	1,1	1215	0,002
10	2,7	2,2	1849	2. 10-3

Perhitungan DO:

Untuk menghitung DO air setiap 3 menit, dihitung dengan  menggunakan rumus :

                Kelompok 1

·                         Kelompok 2

·                        Kelompok 3

·                        Kelompok 4

·                        kelompok 5

·                         kelompok 6

·                         kelompok 7

·                         kelompok 8

·                         Kelompok 9

·                         kelompok 10

4. PEMBAHASAN

4.1  Analisa Prosedur

Dalam praktikum fisiologi hewan air materi respirasi, langkah pertama yang harus dilakukan adalah menyiapkan alat dan bahan. Alat-alat yang digunakan adalah heater aquarium, thermometer, handtally counter, toples 2 liter, DO meter, nampan, lap basah, dan stopwatch. Sedangkan bahan-bahan yang digunakan adalah ikan nila (Oreochromis niloticus), es batu, air tawar, dan aquades.

Langkah selanjutnya adalah disiapkan toples kapasitas 2 liter, karena toples mudah dibawa dan ekonomis, bersifat cembung agar dapat memperjelas pengamatan. Kemudian toples diisi dengan air tawar sampai ¾ bagian, hal ini bertujuan agar toples tidak mudah tumpah dan udara lebih banyak terdapat di bawah atau di dasar. Lalu dimasukkan es batu atau dipanaskan, dan dimasukkan termometer. Jangan sampai menyentuh tangan atau bagian toples, karena akan mempengaruhi suhu pada termometer. Pada tiap kelompok diberi perlakuan berbeda, bertujuan sebagai pembanding saat pengamatan. Pada kelompok 1 dan 6 = 20^oC; kelompok 2 dan 7 = 24^oC; kelompok 3 dan 8 = 28^oC; kelompok 4 dan 9 = 32^oC; dan kelompok 5 dan 10 = 36^oC. Apabila ingin menurunkan atau menaikkan suhu dapat menggunakan es batu dan heater aquarium, yang keduanya bertujuan untuk menstabilkan suhu air pada toples. Kemudian diukur DO (oksigen terlarut) menggunakan DO meter. Sebelum menggunakan DO meter, pertama dinyalakan tombol ON/OFF dan elektroda terlebih dahulu dikalibrasi dengan aquades agar nilai yang didapat benar dan akurat. Dimasukkan elektroda ke dalam toples dan ditunggu sampai nilai DO konstan kemudian dicatat hasilnya.

Langkah berikutnya adalah ikan nila (Oreochromis niloticus) diambil dari ember, diletakkan pada nampan sambil ditutupi lap basah, bertujuan agar ikan tidak stress saat pengamatan. Diamati bukaan mulut tiap 3 menit sebanyak 5 kali dengan handtally counter, bertujuan agar mendapat hasil yang akurat. Lalu diukur DO_t sebagai ukuran akhir DO. Diamati dan dicatat hasilnya dengan rumus:

                                              

4.2  Analisa Hasil     

Berdasarkan hasil praktikum fisiologi hewan air pada pengamatan respirasi telah diperoleh bahwa bukaan mulut ikan nila (Oreochromis niloticus) pada kelompok 5 tidak teratur karena suhu yang berbeda dapat mempengaruhi aktifitas dan sistem respirasi yang terjadi pada ikan tersebut. Pada 3 menit pertama bukaan mulut sebanyak 351; 3 menit kedua sebanyak 594; 3 menit ketiga sebanyak 563; 3 menit keempat sebanyak 549; dan 3 menit kelima sebanyak 541. Rata-rata kelompok 5 dengan suhu 36^oC adalah 519,6. Sedangkan pengamatan DO adalah pada DO awal (DO₀) didapat 3,2 mg/l dan DO akhir (DO_t) didapat 2,3 mg/l. Rata-rata kandungan DO pada kelompok 5 adalah 3,4 x 10^-4. Hal ini menunjukkan bahwa DO sangat mempengaruhi aktifitas dan suhu. Semakin tinggi suhu dalam air maka semakin tinggi aktifitas ikan yang menyebabkan kandungan oksigen di dalam air rendah.

Menurut Salmin (2005), oksigen terlarut (DO) dibutuhkan oleh semua jasad hidup untuk pernafasan, proses metabolisme atau pertukaran zat yang kemudian menghasilkan energi untuk pertumbuhan dan pembiakan. Kadar oksigen dalam air akan bertambah dengan semakin rendahnya suhu dan berkurang dengan semakin tingginya salinitas. Pada lapisan permukaan, kadar oksigen akan lebih tinggi, karena adanya proses difusi antara air dengan udara bebas serta adanya proses fotosintesis.

Menurut Kordi (2004), suhu air akan mempengaruhi kekentalan viskositas air. Perubahan suhu yang drastis dapat mematikan ikan karena terjadi perubahan daya angkat darah. Seperti diketahui selera makan ikan, kisaran tubuh optimum bagi kehidupan ikan adalah 25^o - 52^oC. Bila suhu rendah ikan akan kehilangan nafsu m`kan, sehingga pertumbuhan terhambat, sebaliknya suhu terlalu tinggi ikan akan stress bahkan mati kekurangan oksigen, karena beberapa pathogen berkembang baik pada kondisi tersebut.

4.3  Faktor Koreksi

Pada praktikum fisiologi hewan air materi respirasi terdapat beberapa faktor koreksi sebagai berikut:

1.   Heater aquarium yang kurang baik sehingga suhu tertinggi yang diperlukan memerlukan waktu yang lama.

2.   Terjadi kesalahan pada saat perhitungan sehingga hasil yang didapat tidak akurat.

3.   Handtally counter yang kurang baik sehingga hasil tidak akurat.

4.   Terdapat ukuran ikan yang berbeda-beda.

5.   Pada saat pengambilan ikan nila (Oreochromis niloticus) terjadi kesalahan sehingga ikan menjadi stress.

4.4  Manfaat di Bidang Perikanan

Manfaat di bidang perikanan adalah dengan mempelajari sistem respirasi dari organisme air, maka kita dapat mengetahui dan mensuplai oksigen (O₂) yang tepat bagi kehidupan biota air, misalnya di area pertambakan. Karena oksigen merupakan faktor pembatas, sehingga bila ketersediaannya di dalam suatu perairan tidak mampu mencukupi kehidupan semua anggota budidaya, maka segala aktifitas biota akan terhambat.

5.    KESIMPULAN DAN SARAN

5.1   Kesimpulan

Dari praktikum fisiologi hewan air materi respirasi dapat ditarik kesimpulan sebagai berikut:

      Respirasi yaitu proses pengoksidasian metabolit oleh organisme saat ada oksigen untuk menangkap energi yang dikandung dalam ikatan-ikatan metabolit.

      Respirasi adalah suatu proses perombakan bahan makanan dengan menggunakan oksigen sehingga diperoleh energi dan CO₂.

      Jenis-jenis respirasi adalah respirasi aerob dan respirasi anaerob.

      Faktor-faktor yang mempengaruhi respirasi adalah suhu, kadar CO₂ di dalam udara, ukuran tubuh, umur, aktifitas ikan, dan jenis kelamin.

      Sumber oksigen terlarut dapat berasal dari difusi oksigen yang terdapat di atmosfer dan aktifitas fotosintesis oleh tumbuhan.

      Oksigen dalam air tambak dihasilkan melalui proses difusi dari udara yang mengandung 20,95%.

      Biasanya oksigen masuk dalam air melalui difusi langsung dari udara, aliran-aliran air yang masuk, hujan yang jatuh, dan proses asimilasi tumbuh-tumbuhan hijau.

      Oksigen terlarut (DO) dibutuhkan oleh semua jenis jasad hidup untuk pernafasan, proses metabolisme atau pertukaran zat yang kemudian menghasilkan energi yang berguna untuk pertumbuhan dan pembiakan.

      Transfer oksigen dari lingkungan ke sel dapat dilihat dari beberapa langkah, yaitu celah insang, difusi melewati paru-paru, transfer oksigen melalui darah, dan melalui difusi jaringan.

      DO dapat dijadikan ukuran untuk menentukan mutu air, kehidupan air dapat bertahan jika ada oksigen terlarut minimum sebanyak 5 mg.

      Mekanisme pernafasan pada ikan diatur oleh mulut dan tutup insang.

      Temperatur mempunyai pengaruh besar terhadap kegiatan respirasi.

      Pada 0^oC respirasi sangatlah sedikit, sedangkan pada suhu 30^oC – 40^oC sangat giat.

      Peningkatan suhu mengakibatkan peningkatan viskositas, reaksi kimia, evaporasi, dan volatulasi.

      Konsentrasi gas pada zat cair akan berkurang dengan meningkatnya suhu.

      Beberapa ikan laut membiarkan mulutnya terbuka dan menggunakan gerakan majunya untuk mengalirkan air melalui insang.

      Jumlah rata-rata bukaan mulut ikan nila (Oreochromis niloticus) dari kelompok 1 sampai 10 secara berturut-turut adalah 316,8; 339,6; 379; 264,2; 519,6; 337,6; 334,5; 328,4; 243; dan 369,8.

      DO awal dan DO akhir dari kelompok 1 sampai 10 secara berturut-turut adalah 3,1 dan 2,2; 0,2 dan 0,9; 3,1 dan 2,6; 3,4 dan 2,6; 3,2 dan 2,3; 3,4 dan 2,9; 4,2 dan 3,1; 0,7 dan 2,5; 4,0 dan 1,1; serta 2,7 dan 2,2. Hal ini dikarenakan bahwa faktor DO yang rendah akan mempengaruhi banyaknya bukaan mulut dalam hal respirasi.

5.2   Saran

Diharapkan pada praktikum selanjutnya para praktikan bias lebih memperhatikan bagaimana cara mengamati bukaan mulut ikan pada saat pengamatan atau perhitungan laju respirasi supaya data hasil pengamatan bernilai akurat.

DAFTAR PUSTAKA

Anwar, D, D. A. Setiawibowo dan Y. Triwijiwati. 2009. Respirasi (Tingkat Konsumsi Oksigen) dan Ketahanan Ikan di luar Media Air.http://jurnal.pdii.lipi.go.id/admin/jurnal.pdf. Diakses pada tanggal 16 Maret 2011 pukul 10.00 WIB.

Arrignon and Jacques. 1999. Management of Freshwater Fisheries Science. Publishers, INC : USA.

Effendi dan Hefni. 2003. Telaah Kualitas Air. Kanisius : Yogyakarta.

Giese. 1968. Cell Physiology. Standford University : Philadelphia.

Imam, A. 2010. Proses Respirasi dan Termoregulasi.http://imamabror.wordpress.com/. Diakses pada tanggal 21 Maret 2011 pukul 09.00 WIB.

Izzati, M. 2005. Perubahan Konsentrasi Oksigen Terlarut dan pH Perairan Tambak Setelah Penambahan Rumput Laut (Sargassum plagyophyllum) dan Ekstraknya. Perubahan Konsentrasi Oksigen Terlarut. UNDIP : Semarang.

Kordi, M. G. 2004. Penanggulangan Hama dan Penyakit Ikan. Rinneka Cipta : Jakarta.

Kordi,  G. 2008. Budidaya Perairan. PT Cipta Adityo Bakti : Bandung.

Ratningsih. 2008. Uji Toksisitas Molase Terhadap Respirasi Ikan Mas (Cyprinus carpio Linn) Jurusan Biologi. FMIPA  Universitas Padjajaran Jatinangor KM21, Sumedang.

Rida. 2008. Respirasi. http://sweefir.is.multiply.com/journal. Diakses pada tanggal 21 Maret 2011 pukul 09.00 WIB.

Salmin. 2005. Oksigen Terlarut (DO) dan Kebutuhan Oksigen Biologi (BUD) sebagai salah satu Indikator untuk Menentukan Kualitas Perairan. Oseano, volume XXX.

Suryani. 2010. Sistem Pernafasan pada Pisces.http://www.blogger.com/profile/14802441606210946033.

Sutimin. 2008. Model Matematika Konsentrasi Oksigen Terlarut pada Ekosistem Perairan Danau. UNDIP : Semarang.

Triastuti, J., L. Sulmartiwi dan Y. Dhamayanti. 2009. Ichtyologi. Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga : Surabaya.

Villee, Claude A., Warren F., Walker, Jr. Robert, and D. Barnes. 1984.Zoologi Umum. Erlangga : Jakarta.

Weichert and K. Charles . 1959. Elements of Chordate Anatomy. Mc Grow Hill : New York. 

Diposkan oleh R.Adhariyan Islamy di 19.03 

Label: Laporan Praktikum